Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре

Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6

: [url=http://txt.drevle.com/text/buhalo-vyschie_basidiomicety_v_kulture-1988/46]Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6[/url]
 

Содержание

ПРЕДИСЛОВИЕ

ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ ВЫСШИХ СЪЕДОБНЫХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЕ И ПЕРСПЕКТИВЫ ПРАКТИЧЕСКОГО ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 3. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В КУЛЬТУРЕ И ТАКСОНОМИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПРИЗНАКОВ

ГЛАВА 4. ПЕРВИЧНЫЙ ОТБОР ШТАММОВ СЪЕДОБНЫХ ГРИБОВ ДЛЯ ГЛУБИННОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

ГЛАВА 5. ГЛУБИННОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ШТАММОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ PLEUROTUS OSTREATUS 1300, FLAMMULINA VELUTIPES 112, PANUS TIGRINUS 131

ГЛАВА 6. ПРИНЦИПЫ ОТБОРА ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ С ЦЕЛЬЮ ПОЛУЧЕНИЯ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

OCR
2.3.2. Анализ биомассы и культуральных жидкостей В зависимости от целей экспериментов биомассу учитывали и анализировали пос¬
ле различного времени культивирования. При изучении динамики роста — каждые
4—6 ч, в других случаях — на 3, 5, 7,10-е с^тки культивирования. Химически ана¬
лизировали мицелий, высушенный при 60 6С. Полученные результаты пересчиты¬
вали на абсолютно сухую массу. Последнюю определяли после высушивания об¬
разцов промытого мицелия в откалиброванных стеклянных флаконах при 105 С
(Кашкин и др., 1968). Удельную скорость роста (дтах) рассчитывали по формуле _ 2,3 (lgm, - lgm0). Дтах : : 4 ι м ‘о где т0 и тп\ — концентрации биомассы, соответствующие времени Т0 и Τι — экспо¬
ненциальной фазы роста. Экономический коэффициент (У) рассчитывали по источнику углерода на ос¬
новании данных определения абсолютно сухой массы мицелия и редуцирующих
веществ в культуральной жидкости по формуле (Перт, 1978) где X — урожай биомассы, г/л; S0 и S — начальное и конечное содержание редуци¬
рующих веществ (РВ) в культуральной жидкости, г/л. РВ в культуральной жид¬
кости определяли в пересчете на глюкозу без гидролиза и после 5-часового кислот¬
ного гидролиза эбулиобтатическим методом (Агеева, Корольков, 1953). Общий азот в образцах биомассы определяли по методу Кьельдаля (Сказкин
и др., 1958). При расчете сырого протеина использовали общепринятый коэффи¬
циент 6,-25. При определении аминного азота связанных и свободных внутрикле¬
точных аминокислот пользовались методом Хардинга и Мак-Лина в описании
Л.А.Закордонец (1982). Белок определяли после щелочного гидролиза по методу
Лоури (Lowry et al., 1951). Полный аминокислотный состав образцов биомассы поверхностного мицелия
исследовали методом бумажной хроматографии (Закордонец, 1982). Связанные
аминокислоты исследовали на аминокислотном анализаторе марки ”ААА-881”
после удаления свободных аминокислот спиртовой экстракцией (Закордонец, 1982). Скор незаменимых аминокислот рассчитывали общепринятым методом
(Химический состав ..., 1979). Содержание хитина в образцах сухой биомассы
рассчитывали по разности содержания М-ацетил-О-глюкозамина после гидролиза
НС1, используя коэффициент пересчета глюкозамина на хитине (Петрушко, Ка¬
люжный, 1971). Определение перевариваемости сырого протеина проводили по
методу А.В.Хотянович и др. (1972) с молочной кислотой и пепсином. Наличие у исследуемых штаммов высших базидиомицетов оксидаз (лакка-
зы, тирозиназы, пероксидазы) устанавливали с помощью качественных цветовых
химических реакций, которые проводили путем нанесения капли реактива на по¬
верхность растущей на агаризованной среде колонии- (Stalpers, 1978). Изменение
окраски отмечали через 30 мин, 3,24 и 72 ч. 1. Реакция с α-нафтолом на наличие лакказы. Кашпо спиртово-водного раство¬
ра а-нафтола (2,5 г а-нафтола, 50 мл 95 %-ного этилового спирта, 50 мл воды) на¬
носили на растущий край колонии. При положительной реакции наблюдали фиоле¬
товое или темно-пурпурное окрашивание мицелия. 2. Реакция с р-крезолом на наличие тирозиназы. Каплю 1 %-ного раствора
р-крезола в дистиллированной воде наносили на растущий край и в центр коло¬
нии. При положительной реакции наблюдали оранжево- или красно-коричневое
окрашивание мицелия. 3. Реакция с пирогаллолом и перекисью водорода. Каплю 1 %-ного раствора пирогаллола и 0,4 %-ного раствора Н2 02, смешанных в равных количествах, нано¬
сили на край растущей колонии. При положительной реакции наблюдали оранже¬
во-коричневое или морковно-красное окрашивание. 45