Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре

Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6

: [url=http://txt.drevle.com/text/buhalo-vyschie_basidiomicety_v_kulture-1988/45]Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6[/url]
 

Содержание

ПРЕДИСЛОВИЕ

ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ ВЫСШИХ СЪЕДОБНЫХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЕ И ПЕРСПЕКТИВЫ ПРАКТИЧЕСКОГО ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 3. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В КУЛЬТУРЕ И ТАКСОНОМИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПРИЗНАКОВ

ГЛАВА 4. ПЕРВИЧНЫЙ ОТБОР ШТАММОВ СЪЕДОБНЫХ ГРИБОВ ДЛЯ ГЛУБИННОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

ГЛАВА 5. ГЛУБИННОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ШТАММОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ PLEUROTUS OSTREATUS 1300, FLAMMULINA VELUTIPES 112, PANUS TIGRINUS 131

ГЛАВА 6. ПРИНЦИПЫ ОТБОРА ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ С ЦЕЛЬЮ ПОЛУЧЕНИЯ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

OCR
В колбы наливали по 50 мл среды. Когда мицелий образовывал пленку,его 3—4^>а-
за промывали стерильной дистиллированной водой, измельчали путем встряхива¬
ния и в каждую колбу вносили по 2 мл суспензии. Культивировали на пробироч¬
ной качалке. В каждую пробирку вносили 2 мл инокулюма, приготовленного опи-
‘ санным выше способом. По окончании опыта измеряли значение pH среды и учи¬
тывали сухую массу мицелия. Для определения отношения исследовавшихся культур к источникам мине¬
рального питания использовали те же питательные среды с оптимальным содержа¬
нием С и N для каждого вида, которое устанавливали предварительно. Оптимальное значение pH среды определяли на той же питательной среде, что
и при изучении углеродного питания. Источником углерода служила глюкоза.
Для создания необходимого pH среды, который измеряли на потенциометре до и
после стерилизации, добавляли 1 %-ный раствор NaOH и НС1. Эту же питательную
среду использовали при изучении потребностей в витаминах и стимуляторах.
Витамин Βι (тиамин) вносили асептически в количестве 300 мкг/л после
стерилизации. Отвары растений готовили следующим образом: 1,5 кг зеленой массы залива¬
ли 6 л воды, кипятили 30 мин, настаивали в течение суток, отфильтровывали
и стерилизовали при 50,662 кПа (0,5 атм). Оптимальную концентрацию в каждом
конкретном случае подбирали эмпирически. Питательная среда для глубинного культивирования Pleurotus ostreatus
1300 с отваром красного клевера (г): сахароза — 30; пептон — 3; КН2Р04 — 2;
КС1 — 1,2; MgS04-7H20 — 0,25; отвар клевера — 100 мл; агар —0,1; Н20 — 1 л;
pH 6,0. Первично штаммы, активнорастушие в глубинной культуре, отбирали на
комплексных питательных средах. В качестве универсальной питательной среды,
служившей контролем в ряде опытов, использовали пивное сусло, разведенное
водой до содержания углеводов 2,0±0,2 %, что соответствует 8 сахаристости по
Баллингу. Такой же отбор проводили на комплексных питательных средах, где
в качестве основного источника углерода использовали свекловичную мелассу,
картофельную муку, крахмал, концентрат картофельного сока (ККС) с содержа¬
нием сухих веществ 40.0±2,0 %, послеспиртовую барду, молочную сыворотку,
сульфитные щелока, автолизат синезеленых водорослей. Для комплексных сред
использовали следующую минеральную основу (г/л) : (NH4)2S04 — 3,0,КН2РО4 — 1,2, MgS04*7H20 — 0,25, NaCl - 0,05, прокипяченная и отфильтрованная водо¬
проводная вода 1 л, pH среды 6,0. Как стимулирующие добавки в ряде случаев использовали отвары кормовых
растений, крапивы, дубовой коры, дрожжевой экстракт (ДЭ), кукурузный экст¬
ракт (КЭ) и ККС в количестве 1,0 и 0,1 %. Глубинное культивирование в лабораторных условиях проводили на жидких
питательных средах на круговых качалках при 180—220 об/мин. Соотношение
жидкой и воздушной фаз во встряхиваемых сосудах составляло 1:10, Отобранные
штаммы культивировали в лабораторных ферментерах ”АНКУМ-2” с рабочим
объемом 1,8 л. Некоторые ферментации были проведены в ферментерах ’’Biotec”
с рабочим объемом среды 6 л и ’’Gallencamp” — 3 л. Для инокуляции ферментеров
использовали 5-суточный глубинный мицелий (10 % объема), выращенный в кол-
, бах на качалке и стерильно измельченный в дезинтеграторе. Во время ферментации
осуществляли контроль за основными параметрами: накоплением биомассы, рас¬
ходом компонентов и изменением pH "питательной среды, содержанием в
культуральной жидкости метаболитов, аэрацией, скоростью перемешивания,
температурой. Опытно-промышленное глубинное культивирование штаммов Pleurotus ost¬
reatus 1300 и Panus tigrinus 131 осуществляли в ферментерах емкостью 100,140 л,
3 м3, перемешивание — барботажем воздуха, инокулюм — 10 % объема. Получен¬
ная биомасса промывалась водой и сушилась при температуре 60 ° С на
лентоадой сушилке, в вакуумной сушилке, сушильных шкафах специаль-
441 ной конструкции.