Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре

Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6

: [url=http://txt.drevle.com/text/buhalo-vyschie_basidiomicety_v_kulture-1988/38]Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6[/url]
 

Содержание

ПРЕДИСЛОВИЕ

ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ ВЫСШИХ СЪЕДОБНЫХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЕ И ПЕРСПЕКТИВЫ ПРАКТИЧЕСКОГО ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 3. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В КУЛЬТУРЕ И ТАКСОНОМИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПРИЗНАКОВ

ГЛАВА 4. ПЕРВИЧНЫЙ ОТБОР ШТАММОВ СЪЕДОБНЫХ ГРИБОВ ДЛЯ ГЛУБИННОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

ГЛАВА 5. ГЛУБИННОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ШТАММОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ PLEUROTUS OSTREATUS 1300, FLAMMULINA VELUTIPES 112, PANUS TIGRINUS 131

ГЛАВА 6. ПРИНЦИПЫ ОТБОРА ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ С ЦЕЛЬЮ ПОЛУЧЕНИЯ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

OCR
в стерильной воде и сушили на чистой фильтровальной бумаге. Так обрабатывали
молодые плодовые тела грибов родов Agaricus, Boletus, Tricholoma, Clitocybe,
Leccinum, Paxillus, Tricholomopsis, Polyporus, Lycoperdon, Calvatia, Bovista,
Scleroderma и других с аналогичным габитусом и консистенцией. Чтобы плодовые
тела не напитались водой у более старых экземпляров, а также у слизистых карпо-
форов видов родов Collybia, Laccaria, Marasmius, Oudemansiella и др., после меха¬
нической очистки плодовое тело обтирали горящей ватой, предварительно обильно
смоченной этиловым спиртом, или обжигали его над пламенем горелки. Подготовленное одним из описанных выше способов плодовое тело помещали
вблизи горелки, разламывали. Кусочек ткани из внутренней части, не соприкасаю¬
щейся с поверхностными участками, стерильным скальпелем или копьем перено¬
сили в чашку Петри на фильтровальную бумагу или хорошо застывшую поверх¬
ность агаризованной питательной среды. Размер тканевого инокулята достаточно
большой: 0,3-1,5 см в диаметре. Если плодовое тело слишком маленькое и из не¬
го невозможно извлечь стерильную ткань, его быстро обжигали над пламенем го¬
релки, а затем нарезали ножницами или пинцетом прямо над открытой чашкой
Петри с питательной средой. Такой метод выделения исполь^оваЛи для получения
культур видов родов Marasmius и Laccaria. , Студенистые плодовые тела Hirneola auricula-judae с неровной и обычно инфи¬
цированной поверхностью протирали спиртом и мелко нарезали. Однако сильное
загрязнение, как правило, препятствовало успешному выделению культуры это¬
го гриба, У грибов с крупными плодовыми телами, мясистой ножкой и шляпкой изоля-
ты брали из разных мест: шляпки, ножки, места перехода шляпки в ножку, гиме-
нофора. Наиболее успешно изоляция происходила у грибов с достаточно толстой
ножкой, например Boletus edulis и некоторых других болетальных, если для ино¬
кулята брали крупные кусочки ткани из основания ножки. Хорошие результаты получены нами при выделении культур из гименофора
молодых плодовых тел видов родов Agaricus, Armillariella, Suillus, Pholiota.
Coprinus, еще закрытых покрывалом. Из более зрелых плодовых тел, гименофор
которых значительно инфицирован, инокулят выделяли только на границе гиме-
ниального слоя и мякоти шляпки. Аналогично поступали с плодовыми телами,
у которых гименофор закладывается открыто. Для выделения в культуру Asterophora lycoperdoides использовали хламидо¬
споры, располагающиеся в виде толстого порошистого слоя на шляпке. Они про¬
растали в течение нескольких суток. Мицелиальные культуры гастеромицетов родов Lycoperdon, Calvatia, Bovista.
Scleroderma получали из молодых карпофоров, предварительно простерилизован-
ных этиловым спиртом. Культуры Phallus impudicus выделяли на стадии ’’яйца”, когда плодовое тело
еще окружено слоем слизи и заключено в плотный перидий. Для инокулята ис¬
пользовали кусочки глебы или другой стерильной ткани. При выделении в культу¬
ру Cyathus striatus и C.olla инокулятом служили перидиоли из молодых плодовых
тел с неразорванным перидием. Существенных различий в морфологии колонии и скорости роста мицелия
у изолятов из разных частей плодового тела не отмечено. Выделение культур производили обычно на плотную среду: сусловый или кар-
тофельно-глюкозный агар. Если выделение шло плохо и мицелий не образовывал
колонии вокруг инокулированной ткани, в состав среды добавляли дрожжевой
автолизат, отвар дубовой коры или листьев растений (крапивы, клевера) в коли¬
честве 0,1—0,5 %, водные экстракты из плодовых тел грибов. Для предотвращения
бактериального загрязнения культур использовали подкисленную среду (pH 4,0—
5,0) или среду с добавлением 100—200 ЕД/мл пенициллина и стрептомицина. Как только молодой мицелий начинал расти на поверхности агаризованной
среды, его вместе с кусочком этой среды переносили в пробирку с питательным
агаром для дальнейшего роста. При необходимости делали несколько пассажей
на среде, содержащей антибиотики. При выделении из инфицированных кар¬
пофоров, использовали (Watling, 1971) метод перевернутого агара.