Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре

Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6

: [url=http://txt.drevle.com/text/buhalo-vyschie_basidiomicety_v_kulture-1988/19]Высшие съедобные базидиомицеты в чистой культуре / Бухало А.С.; Отв. ред. Дудка И.А.; АН УССР. Ин-т ботаники им.Н.Г.Холодного. - Киев : Наукова думка, 1988. - ISBN 5-12-000267-6[/url]
 

Содержание

ПРЕДИСЛОВИЕ

ГЛАВА 1. ОСНОВНЫЕ НАПРАВЛЕНИЯ ИССЛЕДОВАНИЙ ВЫСШИХ СЪЕДОБНЫХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В ЧИСТОЙ КУЛЬТУРЕ И ПЕРСПЕКТИВЫ ПРАКТИЧЕСКОГО ИХ ИСПОЛЬЗОВАНИЯ

ГЛАВА 2. МАТЕРИАЛЫ И МЕТОДЫ ИССЛЕДОВАНИЯ

ГЛАВА 3. ИДЕНТИФИКАЦИЯ ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ В КУЛЬТУРЕ И ТАКСОНОМИЧЕСКОЕ ЗНАЧЕНИЕ КУЛЬТУРАЛЬНЫХ ПРИЗНАКОВ

ГЛАВА 4. ПЕРВИЧНЫЙ ОТБОР ШТАММОВ СЪЕДОБНЫХ ГРИБОВ ДЛЯ ГЛУБИННОГО КУЛЬТИВИРОВАНИЯ

ГЛАВА 5. ГЛУБИННОЕ КУЛЬТИВИРОВАНИЕ ШТАММОВ-ПРОДУЦЕНТОВ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ PLEUROTUS OSTREATUS 1300, FLAMMULINA VELUTIPES 112, PANUS TIGRINUS 131

ГЛАВА 6. ПРИНЦИПЫ ОТБОРА ВЫСШИХ БАЗИДИОМИЦЕТОВ С ЦЕЛЬЮ ПОЛУЧЕНИЯ ПИЩЕВОЙ БИОМАССЫ

ЗАКЛЮЧЕНИЕ

СПИСОК ЛИТЕРАТУРЫ

OCR
Melanoleuca. Lyophyiium. Naucoria. Hebeloma. Lepiota. Agaricus. Conocybe. Rhodo-
oaxillus и других, выделенных из тканей карпофоров. В то же время указано, что
в культуре не росли многие виды родов Inocybe, Russula. Boletus. Tricholoma,
Rhodophvllus и Lactarius. Базидиомидеты лучше росли на натуральных средах, чем
на синтетических. Ниже приведен состав некоторых агаризованных питательных
сред, используемых для культивирования высших базидиомицетов. Сусло-агар Шидопличко, 195ЗУ: пивное сусло 8° по Баллингу — 1 л, агар —
20 г, pH среды 5,8. Мяльц-агар (Staipers. 1978): мальц-экстракт — 12,5 г, агар — 20 г, Н20 — 1 л. Среда Норкранс (Norkrans, 1953) : пйокоза — 10 г, аммоний виннокислый —
1 г. КН2РО - 1 г. MgS04*7H20 - 0,5 г, железо лимоннокислое — 5 мг, ZnS04 х
х 7Н2О - 4.4 мг. MgS04 - 5 мг, СаС1: - 55,5 мг, витамин Bj — 40 мг, вода — 1 л. Сусло-агар с отваром дубовой коры (Бухало, 1973а) : пивное сусло 4° по Бал¬
лингу - 1 л. агар — 20 г, отвар дубовой коры - 5 мл, pH среды 5 J5. Глюкозо-глютаминовый агар (Semerdzieva, Cejp, 1966): глюкоза — 20 г, глю-
та{ииновая кислота — 0,5 г, MgS04‘7H20 — 0,5 г, КН2Р04 — 1 г, FeC03 — 10 ка¬
пель (1 %-ный раствор), тиамин — 200 мкг, Н20 — 1л, агар — 20 г, pH среды 5,5. Агар с вишневым отваром (Staipers, 1978) : отвар прокисших вишен — 200 г,
агар — 20 г. Н2 О — 800 мл, pH среды 3,8—4,6. Агар из проростков пшеницы ( Semerdzieva. Cejp, 1966): проростков пшени¬
цы — 100 г,Н20 — 900 мл. агар — 15 г, pH среды 5,5. Проростки кипятятся с водой
15 мин, центрифугируются, объем доводится до первоначального. Овсяный агар (Semerdzieva, Cejp, 1966) : овсяная мука — 30 г, Н20 — 970 мл,
агар — 15 г, pH среды 5.8. Овсяная мука кипятится в воде 1 ч при·перемешивании,
Фильтруется через фильтр Гаузе, доводится до объема 1 л. Морковный агар (Semerdzieva. Cejp, 1966): экстракт моркови — 400 мл,
Н20 - 600 мл. агар - 15 г, pH среды 6.0. Раздробленная морковь смешивается
с водой'в соотношении 2:5, отваривается 30 мин, фильтруется, доводится до
объема 1 л. Агар Модесса (Modess. 1941) : глюкоза — 5 г. мальп-экстракт — 5 г, ЫН4С1 —
0.5 г, MgS(V7H20 — 0,5 г. КН2Р04 - 0.5 г. FeCi3 - 10 капель (1 %-ный раст¬
вор) . Н20— 1 л, тиамин — 150 мкг, pH среды 5,6. КНО-апар (Semerdzieva. Cejp. 1966): глюкоза - 5 г, гидролизат казеина — 1 г,
мальц-экстракт — 5 г. NH4C1 — 0.5 г. MgS04-7H20 - 0,5 г, КЩР04 —0,5 r,FeS04 х
х 7Н2 О — 0.05 г, Н2 О — 1 л. агар — 15 г. Гидролизат казеина стерилизуется через бактериальный фильтр и добавляется
в теплый агар. Картофельно-глюкозная среда (Пидопличко, 1953): картофель — 200 г, глю¬
коза — Ют, Н20 — 1 л. агар — 20 г, pH среды оптимальное для каждого вида. Кар¬
тофель. нарезанный ломтиками, предварительно очищенный и обмытый, варится
30 мин в 1 л воды, отфильтровывается, добавляются агар и вода до объема 1 л. Агар Возняковской (Возняковская, 1954) : глюкоза — 10 г. гидролизат казеи¬
на - 0,75 г, NH4N03 - 1.0 г, КН2Р04 - 1,0 г, СаС12 - 0,2 г, MgS04-7H20 - 0,5 г,
FeCl2 — 1 мг. CuS04- 5Н20 — 1,6 мг, дрожжевой автолизат — 10 мл, тиамин —
150 мкг. агар - 15 г. Н20 — 1 л. pH среды 5.5. Гидролизат казеина и дрожжевой
автолизат стерилизуются через бактериальный фильтр и добавляются в теплый агар. Агар Планкетта (Plunkett. 1953): сахароза — 50 г, аспарагин — 1 г, MgS04 х
х 7Н20 — 2,5 г, КН2Р04 — 5,0 г, FeS04-7H20 — 0,03 г, тиамин — 500 мкг, агар —
20 г, Н2 О — 1 л, pH среды 5.8. Несмотря на широкое использование метода изоляции культур из плодовых
тел, пока нет единого мнения о способах стерилизации плодовых тел, возрасте
карпофоров, пригодных для выделения из них тканевого изолята, наиболее благо¬
приятного места взятия инокулята, его размеров, методов устранения загрязнения
посторонней ьяпсрофлорой. Далеко не все виды легко образуют мицелиальную
культуру из тканевых изолятов. Так, СШодесс (Modess, 1941) и РМикола (Miko¬
la, 1955) приводят большие списки грибов, которые в культуре не растут. М.Эс-
пеншейд (Espenshade, 1962) указывает, что в культуру им были выделены лишь
18 около 50 % видов, из которых изолировались тканевые культуры. В основном